"A Transversalidade da Ciência, Tecnologia e Inovações para o Planeta"

5 a 7 de outubro de 2021

Trabalho 15330

ISSN 2237-9045
Instituição Universidade Federal de Viçosa
Nível Graduação
Modalidade Pesquisa
Área de conhecimento Ciências Biológicas e da Saúde
Área temática Bioquímica
Setor Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular
Bolsa PIBIC/CNPq
Conclusão de bolsa Não
Apoio financeiro CAPES, CNPq, FUNARBE, Outros
Primeiro autor Livia Batista Galinari
Orientador TIAGO ANTONIO DE OLIVEIRA MENDES
Outros membros Thaysa Leite Tagliaferri
Título Desenvolvimento in sílico de uma plataforma multiplex de CRISPR-Cas9 para reversão da resistência a carbapenêmicos em Acinetobacter baumanii.
Resumo Infecções causadas por bactérias resistentes a antibióticos são um grande problema de saúde global que ocasiona centenas de milhares de mortes por ano. Em especial, os níveis de resistência antimicrobiana (RAM) da bactéria Gram-negativa Acinetobacter baumanii a carbapenêmicos, conferido principalmente pelos genes de resistência da família blaoxa, tem aumentado exponencialmente nas últimas décadas, elevando o patógeno ao maior nível de prioridade da Organização Mundial de Saúde (OMS) para pesquisa e desenvolvimento de novos fármacos. Para enfrentar esse problema, métodos alternativos vêm sendo explorados, como o uso do sistema CRISPR-Cas9 para a reversão da RAM, foco desse estudo. Para tal, nosso trabalho objetivou a construção in sílico de RNAs guia (sgRNA) para um sistema de CRISPR-Cas9 multiplex com alvo para dois genes da família blaoxa, visando a total remoção do plasmídeo ou inativação dos genes de resistência e a consequente re-sensibilização de isolados clínicos. Inicialmente, os genes alvo de RAM da família blaoxa presentes em A. baumanii foram especificados quanto ao espectro de resistência e posteriormente selecionados a partir da sua prevalência no Brasil e relevância clínica. Os dois genes escolhidos, blaoxa-72 e blaoxa-143, tiveram seu sítio ativo localizado e caracterizado, para que os sgRNAs selecionados estejam posicionados anteriormente à essa região. Nesse sentido, as sequências dos genes de resistência foram alinhadas por meio do programa Clustal Omega, para identificar regiões conservadas que possuam, na porção terminal, o trinucleotídeo NGG necessário para clivagem pela enzima Cas9. Em seguida, dois sgRNAs foram selecionados, sendo um deles com 100% de complementariedade aos dois genes blaoxa de resistência escolhidos. Os potenciais sgRNAs considerados foram alinhados contra 96 genomas de A. baumanii para assegurar a presença dessas sequências nos isolados, bem como detectar regiões fora do alvo (off-targets) que poderiam ter um alinhamento significativo com os sgRNAs. A partir dessa análise, obtivemos 917 regiões de alinhamento, dentre essas, os potenciais off-targets foram caracterizados e examinados, mas não demonstram riscos para o projeto. Ademais, as sequências que apresentaram total alinhamento foram analisadas, confirmando que pertencem de fato aos genes de beta-lactamases (on-target). Com base nas análises in sílico apresentadas, os sgRNAs serão clonados em um vetor contendo o CRISPR-Cas9 e a capacidade desse sistema de reverter a resistência será testada experimentalmente utilizando isolados clínicos da bactéria.
Palavras-chave CRISPR-Cas9, resistência antimicrobiana, carbapenêmicos
Forma de apresentação..... Vídeo
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